martes, 23 de julio de 2013
sábado, 20 de julio de 2013
Burkholderia glumae en Tumbes
SENASA confirma la presencia de Burkholderia glumae en arroz en Tumbes, esta enfermedad fue diagnostica preliminarmente por el suscrito a fines del mes de abril del presnte año, a partir de unas muestras presentadas por el Ing. Manuel Ramos de la empresa Bayer, se tiene que reconocer la participación del Dr. Carlos Bruzzone quien participó activamente en canalizar las coordinaciones para la llegada del Dr. Gustavo Prado del CIAT-Colombia en el mes mayo, con amplia experiencia en el tema con quien se afianzo la sospecha. Hoy, a tres meses de haberse determinado el problema se pone fin a las conjeturas y se abre un nuevo camino de trabajo que debe unirnos a todos.
Ing. M. Garrido Rondoy
SENASA confirma la presencia de Burkholderia glumae en arroz en Tumbes, esta enfermedad fue diagnostica preliminarmente por el suscrito a fines del mes de abril del presnte año, a partir de unas muestras presentadas por el Ing. Manuel Ramos de la empresa Bayer, se tiene que reconocer la participación del Dr. Carlos Bruzzone quien participó activamente en canalizar las coordinaciones para la llegada del Dr. Gustavo Prado del CIAT-Colombia en el mes mayo, con amplia experiencia en el tema con quien se afianzo la sospecha. Hoy, a tres meses de haberse determinado el problema se pone fin a las conjeturas y se abre un nuevo camino de trabajo que debe unirnos a todos.
Ing. M. Garrido Rondoy
martes, 10 de enero de 2012
Nakataea


Morfología del agente causal
Sobre PDA hojas de arroz, el hongo forma una colonia efusa, inicialmente grisácea a castaño o verde limón, de crecimiento aéreo o semirastrero, inmerso o superficial en el medio.
El micelio del hongo es de color blanco en el interior de los tejidos y oliváceo en la superficie de los mismos, con numerosos apresorios irregulares. Las hifas son septadas profusamente ramificadas, de 2 a 5 micras de diámetro, de color blanco a gris oscuro o negro en medio de cultivo. Los esclerocios son esféricos o subesféricos y de color negro, superficie casi liza, de diámetro de 230 a 270 micras, formados en sustrato natural como en medio de cultivo.
La fase conidial sobre el medio de cultivo PDA hojas de arroz, se produce 10 días después de ser expuesta la colonia a luz directa. Los conidióforos son oscuros, septados, simples o muy poco ramificados, cilíndricos, de 4 a 5 x 100 a 175 micras. Las conidias nacen de uno a uno sobre esterigmas de punta aguda, son fusiformes, algo curvadas, y típicamente triseptadas, de 40 a 83 micras (mayormente de 45 a 55 micras) de longitud y de 11 a 14 micras de ancho.
Las dos células intercalares son de color castaño oscuro, las células apicales son de color verde claro, más granulosas que las células intercalares y la célula apical generalmente más alargada y aguda que la inferior. La germinación de las células apicales es característica de la especie.
viernes, 1 de abril de 2011
Bacterias
ATAQUE DE ERWINIA SP EN BANANO
Erwinia también afecta a los hijos, mostrando síntomas de pudrición acuosa de color oscuro en las vainas, impidiendo su normal desarrollo. La siembra de hijos enfermos produce una pobre germinación, enanismo, amarillamiento de plantas jóvenes (Almodóvar, Díaz y Alvarado, 1997). Las plantas que se desarrollan a partir de ellos muestran pudrición extensa de las vainas, reducción del tamaño de racimo y mal llenado de los dedos (falta de calibre), retrasando la cosecha y aumentando el porcentaje de fruta de rechazo.
viernes, 24 de diciembre de 2010
Navidad
Trips
Los trips son pequeños insectos que se ubican en la inflorescencia y ocasionan manchas rojizas o bordes rojizos o, puntos oscuros ligeramente levantados en la superficie del fruto afectando la apariencia y la calidad. Los daños se presentan mayormente durante el periodo de clima seco y desde la primera semana de formación del fruto.
BANANO
PROBLEMAS FITOSANITARIOS REGISTRADOS EN BANANO EN TUMBES
En los últimos años, el banano orgánico se ha convertido en la fruta fresca de mayor comercialización en el mercado mundial; al igual que en otros cultivos, son muchas las enfermedades e insectos que lo afectan y que están causando un alto porcentaje de pérdidas.
Hongos
Mycosphaerella musicola, e.a. Pseudocercospora musae, Sigatoka Amarilla
Mycosphaerella fijiensis, e.a. Pseudocercospora fijiensis, Sigatoka Negra
Fusarium oxysporum f.sp. cubense, Mal de Panamá
Botryodiplodia theobromae, Pudrición de frutos y coronas
Cordana musae, Cordana en hojas
Colletotrichum musae, Antracnosis en frutos
Maramiellus troyanus, Pudrición de pseudotallo y hojas
Deightoniella torulosa, Pudrición de frutos y manchas en hojas
Fusarium spp., Raíces y pseudotallos
Nigrospora sphaerica, Pudrición de frutos
Periconiella musae, Manchas foliares en hojas
Verticillium theobromae, Punta de cigarro y manchas en hojas
Nematodes
Radopholus similis. Pudrición de raíces
Meloidogyne sp. Agallas o tumores
Virus
Banana streak virus (BSV) en Hojas y pseudotallo
Bacterias
Erwinia sp. Pudricion acuosa en pseudotallos
Insectos:
Tetranychus cinnabarinus. Arañita Roja.
Frankliniella parvula, Chaetanaphothris signipennis.Trips.
Cosmopolites sordidus. Gorgojo Negro
Metamasius hemipterus. Gorgojo Rayado
Opsiphanes sp. Gusano Cabrito
Aphis sp. Pulgones
Planococcus citri. Cochinilla harinosa
Ceramidia sp. Gusano Peludo
En los últimos años, el banano orgánico se ha convertido en la fruta fresca de mayor comercialización en el mercado mundial; al igual que en otros cultivos, son muchas las enfermedades e insectos que lo afectan y que están causando un alto porcentaje de pérdidas.
Hongos
Mycosphaerella musicola, e.a. Pseudocercospora musae, Sigatoka Amarilla
Mycosphaerella fijiensis, e.a. Pseudocercospora fijiensis, Sigatoka Negra
Fusarium oxysporum f.sp. cubense, Mal de Panamá
Botryodiplodia theobromae, Pudrición de frutos y coronas
Cordana musae, Cordana en hojas
Colletotrichum musae, Antracnosis en frutos
Maramiellus troyanus, Pudrición de pseudotallo y hojas
Deightoniella torulosa, Pudrición de frutos y manchas en hojas
Fusarium spp., Raíces y pseudotallos
Nigrospora sphaerica, Pudrición de frutos
Periconiella musae, Manchas foliares en hojas
Verticillium theobromae, Punta de cigarro y manchas en hojas
Nematodes
Radopholus similis. Pudrición de raíces
Meloidogyne sp. Agallas o tumores
Virus
Banana streak virus (BSV) en Hojas y pseudotallo
Bacterias
Erwinia sp. Pudricion acuosa en pseudotallos
Insectos:
Tetranychus cinnabarinus. Arañita Roja.
Frankliniella parvula, Chaetanaphothris signipennis.Trips.
Cosmopolites sordidus. Gorgojo Negro
Metamasius hemipterus. Gorgojo Rayado
Opsiphanes sp. Gusano Cabrito
Aphis sp. Pulgones
Planococcus citri. Cochinilla harinosa
Ceramidia sp. Gusano Peludo
miércoles, 22 de diciembre de 2010
Galeria Fotográfica: CON ÉXITO PRESENTARON NUEVA VARIEDAD DE ARROZ PARA...
Galeria Fotográfica: CON ÉXITO PRESENTARON NUEVA VARIEDAD DE ARROZ PARA...: "Los asistentes también pudieron visitar el stand de la EE. Vista Florida"
martes, 5 de enero de 2010

VIRUS DEL ESTRIADO DEL BANANO (BSV)
Está presente en todas las áreas bananeras de Piura y Tumbes, las plantas afectadas muestran menor altura con rayas cloróticas y necróticas en el tejido foliar.
Los síntomas iníciales se caracteriza por la presencia de estrías cloróticas paralelas a las nervaduras secundarias, de distinto color, inicialmente amarillo pálido, naranja hasta oscuro al momento de necrosarse el tejido, al unirse las estrías se forman rayas cloróticas o necróticas de color oscuro, seguida de la distorsión de la lámina foliar Almodóvar, 2001).
A nivel de frutos, peciolos y nervadura principal de las hojas se observan estrías oscuras, café rojizas a negras que avanzan hacia el interior de los tejidos, mientras que los pseudotallo se rajan o explosionan los tejidos, en la cara interior de la vaina se presentan estrías café rojizo ligeramente alargadas.
La enfermedad no es transmitida mecánicamente, pero si se transmite por propagación vegetativa y por Planococcus citri (Cochinilla harinosa) que se ubica en la cara interior de las vainas y en las malezas.
Manejo integrado
• Erradicar plantas enfermas.
• Usar material de siembra libre de virus.
• Colocar trampas amarillas para capturar los insectos vectores.
• Eliminación de malezas
• Desinfección de herramientas con lejía
• Colocar cal en la zona donde se eliminó las plantas enfermas.
• Examinar los almácigos para eliminar las plantas enfermas.
• Si se va ha extraer semilla de campo comercial revise que las plantas madres no presentes síntomas virales y que muestren buen desarrollo y producción.
• Aplicar productos biológicos como Urpi y Vector para el control de cochinilla.
• Eliminar vainas secas para disminuir las zonas de refugio del insecto.
CONTROL PARA TRIPS
• Colocar las fundas tan pronto se descuelgue la cucula.
• Deflore el racimo lo más temprano posible.
• Cortar la cuarta parte inferior de la cucula, tan pronto aparezca, para eliminar las flores que no fructifican y que sirven de refugio al insecto.
• Sino corta la cucula a su aparición elimínela a las dos semanas de aparecer el falso dedo.
• Las manos podadas en el deschive no se deben dejar en el campo, para evitar que los trips que están en ellas alcancen el suelo.
• Use Depredadores como: Aeolothrips intermedius, A. fasciatus y A. tenuicornis; Orius laevigatus, O. albidipennis y O. majusculus y Antocoridos. Plantas refugio: Maíz, Haba. Hongos entomopatógenos: Verticillium lecanii, Beauveria bassiana, Paecylomyces fumoroseus, Metarryzium anisopliae y Entomophthora virulenta
• Siembre plantas refugio de controladores como chinches, entre los bordos de los canales de regadío o en las regaderas terciarias.
PUDRICIÓN SECA DEL TALLO DEL BANANO
Marasmiellus troyanus
Esta enfermedad se presenta con mayor frecuencia durante la etapa lluviosa, se caracteriza por la presencia de una masa micelial blanca que crece sobre las vainas de las hojas que forman el pseudotallo. El hongo causa una pudrición seca en forma de parches marrones o blanco amarillento, que comienzan en el tallo a nivel del suelo y se extiende hasta la parte superior del pseudotallo. Al invadir el hongo los tejidos internos las hojas inferiores de la planta adquieren una coloración amarillenta, secándose prematuramente. Los pseudotallo afectados presenta un diámetro menor al normal y muestran una consistencia dura y seca en la zona de ataque del patógeno
Marasmiellus troyanus
Esta enfermedad se presenta con mayor frecuencia durante la etapa lluviosa, se caracteriza por la presencia de una masa micelial blanca que crece sobre las vainas de las hojas que forman el pseudotallo. El hongo causa una pudrición seca en forma de parches marrones o blanco amarillento, que comienzan en el tallo a nivel del suelo y se extiende hasta la parte superior del pseudotallo. Al invadir el hongo los tejidos internos las hojas inferiores de la planta adquieren una coloración amarillenta, secándose prematuramente. Los pseudotallo afectados presenta un diámetro menor al normal y muestran una consistencia dura y seca en la zona de ataque del patógeno
PUDRICIÓN ACUOSA DEL PSEUDOTALLO: Erwinia sp
Esta enfermedad afecta la planta desde la siembra hasta la cosecha y esta presente en todas las áreas bananeras de Piura y Tumbes durante todo el año, siendo los meses de diciembre a marzo donde se presentan los mayores ataques. Los síntomas se caracterizan por la presencia de manchas en las vainas de aspecto acuoso, translúcidas, localizadas en cualquier parte del pseudotallo; posteriormente estas manchas toman una coloración castaño rojizo. En ataques avanzados las zonas afectadas toman una coloración oscura y al presionar la parte afectada con los dedos, de los tejidos circundantes sale un líquido de olor fétido, (Ordosgoitti, 1997).
Los síntomas en las hojas se manifiestan por la presencia de un margen violáceo muy fino, seguidos de un amarillamiento que se proyecta hacia la nervadura central, los daños avanzan de abajo hacia arriba mostrándose posteriormente con amarillamiento violento de todas las hojas, y su posterior caída a partir de la base del pedúnculo en el punto de inserción con la vaina en el pseudotallo.
La enfermedad puede ingresar a través de heridas ocasionadas por los machete o por el gorgojo, originando la pudrición de vainas y rizomas las plantas afectadas muestran marchitez y perdida de anclaje; durante las épocas de alta humedad relativa alcanza a los hijuelos a través de las vainas, impide su normal desarrollo convirtiéndose en un medio de transporte para la bacteria.
Bajo condiciones de alta humedad, puede generar la ruptura del tallo afectando la producción.
Control:
• Desinfección de machetes, curvos y podones con lejía, al termino de las labores realizadas en cada planta.
• Aplicar fungicida a base de cobre (Phyton 27 a 600 cc/ha) antes del inicio del periodo lluvioso o cuando los niveles de severidad sean altos.
• Eliminar plantas enfermas desde la raíz y aplicar cal en el hoyo.
• Controlar la presencia de los gorgojo Negro y Rayado.
• Desinfectar los hijos para la siembra con Phyton 27.
• Durante la época lluviosa cortar los pseudotallos, al termino de la cosecha, en 7 para evitar se acumule el agua de lluvia y se propague la bacteria.
martes, 7 de julio de 2009
Trichoderma
La sóla incorporación de los rastrojos de la cosecha de arroz a la preparación de los campos, ejercen un buen control de la severidad de Rhyzoctonia solani en el desarrollo del cultivo, obtenidose con este sistema una reducción del 28% de la severidad ocasionada por Rhizoctonia como causante del “Añublo de las Vainas”. Cuando se empleo Trichoderma harzianum (Silanki) junto a la incorporación de rastrojo, como en pica y quema se obtuvo un control en el nivel de severidad de la enfermedad del 13,40 y 14,27% respectivamente.
La aplicación de aceleradores de la descomposición de la materia orgánica (Bacthon) más T.harzianum (Silanki) a la incorporación de los rastrojos, permiten una rápida descomposición de los residuos de la cosecha y el desarrollo de la acción antagónica de T.harzianum sobre las estructuras de conservación de los hongos fitopatógenos presentes en el suelo y en el rastrojo incorporado, estas pruebas nos muestran una reducción en el número de estructuras mayor del 50% del potencial de inoculo constituido por microesclerotes y esclerotes de Nakataea y Rhizoctonia en el suelo.
lunes, 22 de junio de 2009
Banano
Los trips son pequeños insectos que se ubican en la inflorescencia y ocasionan manchas rojizas o bordes rojizos o, puntos oscuros ligeramente levantados en la superficie del fruto afectando la apariencia y la calidad. Los daños se presentan mayormente durante el periodo de clima seco y desde la primera semana de formación del fruto.
domingo, 15 de febrero de 2009
sábado, 14 de febrero de 2009
ETIOLOGÍA DE LA PUDRICION DE LOS TALLOS Y LAS VAINAS DEL ARROZ
En los últimos años en los departamentos de Tumbes y Piura el cultivo de arroz ha sido afectado por la Pudrición de Tallos y Vainas desde la etapa de almácigo hasta cosecha. La presencia de esta enfermedad fue reportada en Tumbes y Piura por Jimenez (1979).
Los trabajos de investigación realizados entre 1996 y 1998 en Tumbes y en el 2001 en Piura, permitieron observar la presencia de Nakataea y Gaeumannomyces, mientras que durante el Fenómeno de "El NIño" del año 1998, en Tumbes se aisló junto a Nakataea y Gaeumannomyces a Rhizoctonia solani, Pyrenochaeta oryzae y Ascochyta graminícola. Las investigaciones realizadas en el 2002 han confirmado que los daños causados por la Pudrición de Tallos y de Vainas en Tumbes y Piura son producidos por varios patógenos como Nakataea sigmoidea, Rhizoctonia solani, R.oryzae-sativae, R.oryzae y Gaeumannomyces graminis var graminis, con una amplia distribución en todos los campos arroceros de ambos departamentos; similares resultados se observaron en diferentes zonas arroceras de Ecuador, como Arenillas, Guayaquil, Babahoyo, San Borondon y Quevedo.
La información comprendida en este boletin constituyen los resultados de varios años de investigación en arroz en el norte del Perú y parte de Ecuador, y se publica con la finalidad de poner en manos de los profesionales, técnicos y agricultores una herramienta de trabajo que ayude a identificar estas enfermedades bajo condiciones de campo y en el momento oportuno, con el fin de aplicar las medidas de control que mejor convenga
En los últimos años en los departamentos de Tumbes y Piura el cultivo de arroz ha sido afectado por la Pudrición de Tallos y Vainas desde la etapa de almácigo hasta cosecha. La presencia de esta enfermedad fue reportada en Tumbes y Piura por Jimenez (1979).
Los trabajos de investigación realizados entre 1996 y 1998 en Tumbes y en el 2001 en Piura, permitieron observar la presencia de Nakataea y Gaeumannomyces, mientras que durante el Fenómeno de "El NIño" del año 1998, en Tumbes se aisló junto a Nakataea y Gaeumannomyces a Rhizoctonia solani, Pyrenochaeta oryzae y Ascochyta graminícola. Las investigaciones realizadas en el 2002 han confirmado que los daños causados por la Pudrición de Tallos y de Vainas en Tumbes y Piura son producidos por varios patógenos como Nakataea sigmoidea, Rhizoctonia solani, R.oryzae-sativae, R.oryzae y Gaeumannomyces graminis var graminis, con una amplia distribución en todos los campos arroceros de ambos departamentos; similares resultados se observaron en diferentes zonas arroceras de Ecuador, como Arenillas, Guayaquil, Babahoyo, San Borondon y Quevedo.
La información comprendida en este boletin constituyen los resultados de varios años de investigación en arroz en el norte del Perú y parte de Ecuador, y se publica con la finalidad de poner en manos de los profesionales, técnicos y agricultores una herramienta de trabajo que ayude a identificar estas enfermedades bajo condiciones de campo y en el momento oportuno, con el fin de aplicar las medidas de control que mejor convenga
DINÁMICA DE LAS PUDRICIONES DE TALLOS Y VAINAS DEL ARROZ
La influencia del clima
Se conoce que los hongos patógenos comprometidos con el desarrollo de la Pudrición de Tallos y Vainas del Arroz, requieren de condiciones medio ambientales que favorezcan su desarrollo. Nakataea y Geumannomyces requieren entre 15 °C y 35 °C de temperatura. Rhizoctonia solani ve favorecido el desarrollo de la enfermedad con temperaturas del suelo de 25 °C a 30 °C, y los síntomas aparecen en un mes; entre 20 °C a 25 °C, los síntomas se manifiestan en 3 a 4 meses; y la enfermedad no se presenta por debajo de 20 °C (Cedeño, 1996; Pantoja, 1996). Estas condiciones permiten que estos patógenos se encuentren en diferentes países como Colombia, Argentina, Brasil, Venezuela, Estados Unidos, Japón, Pakistán, Panamá (Ou, 1984; Pantoja, 1996), Nicaragua y Ecuador.
Las condiciones del clima, durante y después de los procesos del Fenómeno El Niño, en Tumbes, Perú, influyeron en la mayor distribución y desarrollo de algunos hongos patógenos que atacan al cultivo de arroz. Se observó que los porcentajes de incidencia de las enfermedades se incrementaron con respecto a una campaña normal, siendo favorecidas las pudriciones por la mayor humedad del suelo ocasionadas por las constantes lluvias, un mal drenaje y la mala nivelación de los campos (Garrido, 1998).
El inóculo y la planta enferma
Bajo condiciones favorables, el hongo patógeno se establece dentro o sobre la superficie de una planta huésped y origina la infección que, durante el desarrollo de las plantas, determina la pudrición de tallos y vainas. Estas plantas infectadas son fuente de micelios y de esporas, que constituyen los inóculos naturales.
Tan pronto la planta cultivada llega a la madurez, el inóculo se disemina con el riego y, durante el proceso de gradeo y de fangueo, se intensifica este proceso de propagación de la enfermedad. Probablemente las especies de Nakataea puedan diseminarse a través de la semilla (Gutiérrez, 2002), pero ocurre con facilidad durante el transporte de plántulas para la siembra.
Estos patógenos del suelo están ampliamente distribuidos en todas las zonas agrícolas donde se cultiva arroz en el Perú. Todos estos microorganismos tienen gran capacidad de sobrevivencia, lo cual dificulta su control, es decir, la aplicación de diversas medidas que puedan ayudar al manejo de estas enfermedades, bajo condiciones de campo.
Dispersión
Para que la enfermedad pueda distribuirse eficazmente, el inóculo debe ser llevado desde el lugar en que se produce hasta la zona donde puede causar una nueva infección. En los diversos mecanismos de liberación de estructuras del patógeno intervienen varios factores externos como la lluvia, el agua de riego, la maquinaria agrícola, etc.
El agua de regadío es la mejor forma de diseminación de estas enfermedades; el agua arrastra los microesclerotes y esclerotes de Nakataea y Rhizoctonia. Otra forma de diseminación es la maquinaria agrícola; los tractores al momento de preparar y fanguear los campos; las cosechadoras que al termino de la jornada ingresan a varios campos llevando consigo tierra e inóculo.
Transmisión
En la transmisión participan factores bióticos como el hombre cuando ingresa a las pozas a realizar diversas labores agrícolas como el fangueo, el abonamiento o la aplicación de pesticidas; pero la mayor fuente de transmisión son los lechuguinos al llevar en sus vainas la enfermedad.
Fuente de inóculo
En estas enfermedades fungosas, la fuente de inóculo se ubica en el suelo, por ser el lugar donde las estructuras de conservación de estos patógenos caen al final de la campaña agrícola. Desde allí, con ayuda de la maquinaria y del agua de riego, se transporta hacia otros campos.
Producción de inóculo
La mayor producción del inóculo de estos patógenos se da tan pronto se inicia la madurez del cultivo, y los daños pueden ser observados desde las primeras etapas de desarrollo. En Nakataea se da bajo la forma de microesclerotes contenidos en las vainas o dentro del tallo. En Gaeumannomyces, las peritecias se forman dentro de las vainas y los rhizomorfos en la superficie de la cara interior de las vainas (Urquijo, 1971). En Rhizoctonia oryzae-sativae, los esclerotes se forman en el interior de las células de las vainas o en la superficie. En el caso de Rhizoctonia solani y Rhizoctonia oryzae los esclerotes se producen en la superficie del tejido. El color, tamaño y forma de cada estructura son características de cada patógeno (Cedeño, 1997).
Reservas del inóculo
Cuando no se controla el patógeno, puede permanecer por mucho tiempo en el suelo o pasar de una campaña a otra en las malezas, en los tejidos, en los desechos vegetales y formar un depósito de inóculo en el suelo que se constituirá en una fuente de infección y amenaza para el cultivo. Las microesclerotias de Nakataea pueden permanecer viables en el suelo hasta por 6 años (Ou, 1985); el micelio de Gaeumannomyces puede permanecer viable por 2 a 3 años (Smith, 1992); y el de Rhizoctonia hasta 21 meses (Ou, 1985).
La cantidad de microesclerotes o esclerotes formados al término de una campaña agrícola, representa el inóculo inicial que la planta encontrará al momento de la siembra. Se ha efectuado algunos cálculos sobre las poblaciones de inóculos contenidas en 100 gramos y en un metro cuadrado de suelo. Para el hongo Nakataea, de 26 a 255 microesclerotes; para R. solani de 30 a 83 esclerotes; y, para R. oryzae de 0 a 197 esclerotes, a pesar de haberse realizado la labor de “pica y quema”. En todos los casos estas cantidades son suficientemente altas como para iniciar una epidemia, a pesar de la acción de la quema de los rastrojos que se hace al término de la campaña.
Con tales poblaciones de inóculos, se presentan síntomas desde los 15 días de edad de cultivo en almácigo, y a partir de los 25 días en una siembra al voleo.
La influencia del clima
Se conoce que los hongos patógenos comprometidos con el desarrollo de la Pudrición de Tallos y Vainas del Arroz, requieren de condiciones medio ambientales que favorezcan su desarrollo. Nakataea y Geumannomyces requieren entre 15 °C y 35 °C de temperatura. Rhizoctonia solani ve favorecido el desarrollo de la enfermedad con temperaturas del suelo de 25 °C a 30 °C, y los síntomas aparecen en un mes; entre 20 °C a 25 °C, los síntomas se manifiestan en 3 a 4 meses; y la enfermedad no se presenta por debajo de 20 °C (Cedeño, 1996; Pantoja, 1996). Estas condiciones permiten que estos patógenos se encuentren en diferentes países como Colombia, Argentina, Brasil, Venezuela, Estados Unidos, Japón, Pakistán, Panamá (Ou, 1984; Pantoja, 1996), Nicaragua y Ecuador.
Las condiciones del clima, durante y después de los procesos del Fenómeno El Niño, en Tumbes, Perú, influyeron en la mayor distribución y desarrollo de algunos hongos patógenos que atacan al cultivo de arroz. Se observó que los porcentajes de incidencia de las enfermedades se incrementaron con respecto a una campaña normal, siendo favorecidas las pudriciones por la mayor humedad del suelo ocasionadas por las constantes lluvias, un mal drenaje y la mala nivelación de los campos (Garrido, 1998).
El inóculo y la planta enferma
Bajo condiciones favorables, el hongo patógeno se establece dentro o sobre la superficie de una planta huésped y origina la infección que, durante el desarrollo de las plantas, determina la pudrición de tallos y vainas. Estas plantas infectadas son fuente de micelios y de esporas, que constituyen los inóculos naturales.
Tan pronto la planta cultivada llega a la madurez, el inóculo se disemina con el riego y, durante el proceso de gradeo y de fangueo, se intensifica este proceso de propagación de la enfermedad. Probablemente las especies de Nakataea puedan diseminarse a través de la semilla (Gutiérrez, 2002), pero ocurre con facilidad durante el transporte de plántulas para la siembra.
Estos patógenos del suelo están ampliamente distribuidos en todas las zonas agrícolas donde se cultiva arroz en el Perú. Todos estos microorganismos tienen gran capacidad de sobrevivencia, lo cual dificulta su control, es decir, la aplicación de diversas medidas que puedan ayudar al manejo de estas enfermedades, bajo condiciones de campo.
Dispersión
Para que la enfermedad pueda distribuirse eficazmente, el inóculo debe ser llevado desde el lugar en que se produce hasta la zona donde puede causar una nueva infección. En los diversos mecanismos de liberación de estructuras del patógeno intervienen varios factores externos como la lluvia, el agua de riego, la maquinaria agrícola, etc.
El agua de regadío es la mejor forma de diseminación de estas enfermedades; el agua arrastra los microesclerotes y esclerotes de Nakataea y Rhizoctonia. Otra forma de diseminación es la maquinaria agrícola; los tractores al momento de preparar y fanguear los campos; las cosechadoras que al termino de la jornada ingresan a varios campos llevando consigo tierra e inóculo.
Transmisión
En la transmisión participan factores bióticos como el hombre cuando ingresa a las pozas a realizar diversas labores agrícolas como el fangueo, el abonamiento o la aplicación de pesticidas; pero la mayor fuente de transmisión son los lechuguinos al llevar en sus vainas la enfermedad.
Fuente de inóculo
En estas enfermedades fungosas, la fuente de inóculo se ubica en el suelo, por ser el lugar donde las estructuras de conservación de estos patógenos caen al final de la campaña agrícola. Desde allí, con ayuda de la maquinaria y del agua de riego, se transporta hacia otros campos.
Producción de inóculo
La mayor producción del inóculo de estos patógenos se da tan pronto se inicia la madurez del cultivo, y los daños pueden ser observados desde las primeras etapas de desarrollo. En Nakataea se da bajo la forma de microesclerotes contenidos en las vainas o dentro del tallo. En Gaeumannomyces, las peritecias se forman dentro de las vainas y los rhizomorfos en la superficie de la cara interior de las vainas (Urquijo, 1971). En Rhizoctonia oryzae-sativae, los esclerotes se forman en el interior de las células de las vainas o en la superficie. En el caso de Rhizoctonia solani y Rhizoctonia oryzae los esclerotes se producen en la superficie del tejido. El color, tamaño y forma de cada estructura son características de cada patógeno (Cedeño, 1997).
Reservas del inóculo
Cuando no se controla el patógeno, puede permanecer por mucho tiempo en el suelo o pasar de una campaña a otra en las malezas, en los tejidos, en los desechos vegetales y formar un depósito de inóculo en el suelo que se constituirá en una fuente de infección y amenaza para el cultivo. Las microesclerotias de Nakataea pueden permanecer viables en el suelo hasta por 6 años (Ou, 1985); el micelio de Gaeumannomyces puede permanecer viable por 2 a 3 años (Smith, 1992); y el de Rhizoctonia hasta 21 meses (Ou, 1985).
La cantidad de microesclerotes o esclerotes formados al término de una campaña agrícola, representa el inóculo inicial que la planta encontrará al momento de la siembra. Se ha efectuado algunos cálculos sobre las poblaciones de inóculos contenidas en 100 gramos y en un metro cuadrado de suelo. Para el hongo Nakataea, de 26 a 255 microesclerotes; para R. solani de 30 a 83 esclerotes; y, para R. oryzae de 0 a 197 esclerotes, a pesar de haberse realizado la labor de “pica y quema”. En todos los casos estas cantidades son suficientemente altas como para iniciar una epidemia, a pesar de la acción de la quema de los rastrojos que se hace al término de la campaña.
Con tales poblaciones de inóculos, se presentan síntomas desde los 15 días de edad de cultivo en almácigo, y a partir de los 25 días en una siembra al voleo.
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